Tm de Primers Biologia Molecular

Temperatura de melting (Tm) de primers para PCR

Digite a sequência do primer e veja a Tm pelo método Nearest-Neighbor (SantaLucia, 1998), comparada com a regra de Wallace, mais a Ta sugerida e a triagem de hairpin/dímero. O resultado atualiza a cada tecla.

Apenas A, T, C ou G — sem RNA (U) nem códigos de ambiguidade IUPAC.
Informe para calcular a Ta do par e a triagem de dímero cruzado entre os dois.
Padrão de PCR: 50 mM. Deixe em branco para usar o padrão.
Padrão de PCR: 250 nM. Deixe em branco para usar o padrão.

Digite a sequência do primer acima para ver a Tm.

Soluções sob medida

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Implementamos versões sob medida e automações para quem desenha primers com frequência: cálculo de Tm em lote a partir de planilha, checagem cruzada de dímero entre dezenas de pares e integração com o fluxo de desenho de painéis multiplex do seu laboratório.

As duas fórmulas: Wallace e Nearest-Neighbor

A regra de Wallace conta bases: cada A ou T soma 2 °C, cada G ou C soma 4 °C.

Tm = 2 × (A + T) + 4 × (G + C)

É rápida, mas só foi validada para primers de 14 a 20 bases, em torno de 50 mM de sal monovalente — fora dessa faixa, o erro cresce. O Nearest-Neighbor (SantaLucia, 1998) soma a energia livre de cada par de bases empilhado com o vizinho, mais a penalidade de iniciação nas pontas, e converte para temperatura:

Tm = (ΔH° × 1000) ÷ (ΔS° + R × ln(CT/x)) − 273,15

O ΔS° é então corrigido pela concentração de sal monovalente informada (mesmo artigo), porque o Tm sobe com mais sal disponível para neutralizar a repulsão dos fosfatos do DNA.

Exemplo resolvido — primer de 8 bases

Sequência 5'-GACTGCAT-3', sem autocomplementaridade, 50 mM Na⁺, 250 nM de primer:

Par empilhadoΔH° (kcal/mol)ΔS° (cal/mol·K)
GA−8,2−22,2
AC (= espelho de GT)−8,4−22,4
CT−7,8−21,0
TG (= espelho de CA)−8,5−22,7
GC−9,8−24,4
CA−8,5−22,7
AT−7,2−20,4
Iniciação 5' (G) + 3' (T)+0,1 +2,3−2,8 +4,1

ΔH° total = −56,0 kcal/mol · ΔS° total (1 M NaCl) = −154,5 cal/(mol·K)
ΔS° corrigido (50 mM Na⁺, 7 pares empilhados) ≈ −162,2 cal/(mol·K)
Tm = (−56.000) ÷ (−162,2 + 1,987 × ln(2,5×10⁻⁷ ÷ 4)) − 273,15 ≈ 13,8 °C

Este é o mesmo exemplo verificado em test.html, com os valores exatos que o código produz (a calculadora nunca arredonda antes de terminar a conta).

Comparando os dois métodos

PrimerComprimentoWallaceNearest-NeighborObservação
ATCGGCTAGCTAGCTTACGG20 nt62,0 °C55,6 °CDentro da faixa de Wallace — mesmo assim, 6,4 °C de diferença.
GCGACTGACTGACTGA16 nt50,0 °C49,7 °CDentro da faixa de Wallace, valores próximos.
ATCGATCGATCG12 nt36,0 °C36,0 °CFora da faixa recomendada de Wallace (14–20 nt) — use o Nearest-Neighbor.

Temperatura de anelamento (Ta) e triagem de hairpin/dímero

A heurística usada aqui é Ta = Tm (Nearest-Neighbor) do primer de menor Tm entre o par, menos 5 °C — um ponto de partida comum em protocolos de desenho de PCR, a otimizar em bancada com um gradiente de temperatura. A triagem de hairpin/dímero verifica apenas se a extremidade 3' de um primer é complementar a outro trecho (da própria sequência ou do parceiro): é um alerta para revisão manual, não uma análise termodinâmica de estrutura secundária (não calcula ΔG de dobramento).

Perguntas frequentes

Qual a diferença entre a regra de Wallace e o método Nearest-Neighbor?

A regra de Wallace (Tm = 2×(A+T) + 4×(G+C)) é uma aproximação rápida, validada para primers de 14 a 20 bases em cerca de 50 mM de sal. O método Nearest-Neighbor (SantaLucia, 1998) soma a energia de empilhamento de cada par de bases vizinhas e é mais preciso para qualquer comprimento e qualquer concentração de sal — por isso é o valor que esta calculadora usa como resultado principal.

Como a calculadora sugere a temperatura de anelamento (Ta)?

Pela heurística padrão de desenho de PCR: Ta = Tm (Nearest-Neighbor) do primer de menor Tm entre o par, menos 5 °C. É um ponto de partida para otimizar em bancada, não um valor definitivo.

O que significa o alerta de hairpin ou dímero?

É uma triagem aproximada: verifica se a extremidade 3' do primer é complementar a outro trecho da própria sequência (hairpin/autodímero) ou do primer parceiro (dímero cruzado). Não é uma análise termodinâmica de estrutura secundária — sinaliza apenas candidatos a revisar manualmente ou em uma ferramenta de estrutura secundária dedicada.

Os dados da sequência saem do meu navegador?

Não. O cálculo roda inteiramente no seu navegador, em JavaScript. Nenhuma sequência, concentração ou resultado é enviado a este site ou a terceiros — você pode conferir na aba Rede das ferramentas do navegador (F12).

Esta calculadora substitui a otimização em bancada?

Não. Ela aplica fórmulas publicadas sobre os valores que você digita. A validação experimental da reação (gradiente de temperatura, controle negativo, eletroforese) continua sendo responsabilidade do responsável técnico do laboratório.

Fontes: SantaLucia J Jr. (1998), "A unified view of polymer, dumbbell, and oligonucleotide DNA nearest-neighbor thermodynamics", PNAS 95(4):1460–1465 (Tabela 1, parâmetros unificados e correção de sal). Regra de Wallace: Suggs SV et al. (1981), ICN-UCLA Symp Dev Biol Using Purified Genes 23:683–693. Consultado em 22/09/2026.

Aviso: esta ferramenta apoia o cálculo de Tm e Ta a partir de fórmulas publicadas; não substitui a otimização experimental da reação nem a responsabilidade técnica do profissional habilitado do laboratório.

Outras ferramentas de biologia molecular e microbiologia

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